Przejdź do treści
Baza wiedzy/ Metody sekwencjonowania/ Whole Genome Bisulfite Sequencing (WGBS)

Whole Genome Bisulfite Sequencing (WGBS)

Sprawdź, jak WGBS wykrywa wzory metylacji DNA w całym genomie, na czym polega konwersja bisulfitowa i jakie są zastosowania.

KATEGORIA
Lista usług NGS
ETAP PROJEKTU
01 · Metody sekwencjonowania
CZAS CZYTANIA
3 min
AKTUALIZACJA
23 czerwca 2026
OPRACOWANIE
Zespół Techniczny weSEQ.IT
Wyceń projekt

Whole Genome Bisulfite Sequencing to najbardziej kompleksowa metoda analizy metylacji DNA, umożliwiająca analizę wzorów metylacji na poziomie pojedynczych nukleotydów w całym genomie. Technologia łączy chemiczną konwersję bisulfidową DNA z sekwencjonowaniem nowej generacji, zapewniając najwyższą rozdzielczość w badaniach epigenetycznych.

Metoda pozwala na identyfikację metylowanych cytozyn zarówno w regionach genowych, jak i międzygenowych, dostarczając pełnego obrazu zmian epigenetycznych zachodzących w badanym materiale biologicznym.

Ilustracja do artykułu o sekwencjonowaniu bisulfitowym całego genomu (WGBS)

Przebieg procesu WGBS

01Izolacja i kontrola jakości DNA: Proces rozpoczyna się od izolacji wysokiej jakości DNA genomowego z badanego materiału. Oceniane jest integralność, czystość oraz ilość DNA.
02Konwersja bisulfidowa: DNA poddawane jest działaniu bisulfitu sodu, który przekształca niemetylowane cytozyny w uracyl, a metylowane pozostawia bez zmian. Jest to kluczowy etap umożliwiający rozróżnienie miejsc metylowanych i niemetylowanych podczas sekwencjonowania.
03Tworzenie bibliotek: Po konwersji DNA przygotowywana jest biblioteka do sekwencjonowania. Na tym etapie dodawane są adaptery umożliwiające amplifikację i odczyt sekwencji.
04Sekwencjonowanie: Biblioteki są sekwencjonowane przy wysokiej głębokości pokrycia, co pozwala na precyzyjne określenie poziomu metylacji w milionach pozycji genomowych.
05Analiza bioinformatyczna: dane podlegają specjalistycznej analizie obejmującej:
  • kontrolę jakości odczytów,
  • mapowanie sekwencji do genomu referencyjnego,
  • identyfikację metylowanych cytozyn,
  • wyznaczanie poziomów metylacji,
  • analizę różnicowej metylacji pomiędzy próbkami,
  • przygotowanie raportów i wizualizacji wyników.
Schemat przebiegu procesu WGBS - od próbki do wyników

Zastosowanie WGBS

WGBS znajduje zastosowanie w szerokim zakresie badań podstawowych i aplikacyjnych związanych z epigenetyką.

Badania nowotworowe

  • identyfikacja biomarkerów epigenetycznych,
  • analiza mechanizmów rozwoju nowotworów,
  • badanie heterogeniczności nowotworowej,
  • monitorowanie odpowiedzi na terapię.

Medycyna translacyjna i diagnostyka

  • odkrywanie markerów diagnostycznych i prognostycznych,
  • badania chorób genetycznych i epigenetycznych,
  • rozwój medycyny spersonalizowanej.

Badania rozwojowe

  • analiza zmian epigenetycznych podczas różnicowania komórek,
  • badania embriogenezy,
  • ocena procesów starzenia organizmu.

Biologia roślin i zwierząt

  • analiza regulacji ekspresji genów,
  • badania adaptacji środowiskowej,
  • projekty hodowlane i genomika funkcjonalna.

Badania środowiskowe i toksykologiczne

  • ocena wpływu czynników środowiskowych na epigenom,
  • badania odpowiedzi organizmów na stres środowiskowy,
  • analiza skutków ekspozycji na substancje chemiczne.

Charakterystyka techniczna WGBS

  • Tryb sekwencjonowania: 2x150bp
  • Sekwenatory: platforma Illumina, sekwenatory NovaSeq 6000 oraz NovaSeq X.
  • Rekomendowane pokrycie genomu:
    • 30x na próbkę - minimum 3 powtórzenia biologiczne i dostępny, wysokiej jakości genom referencyjny
    • Dostępne są również inne konfiguracje w zależności od potrzeb klienta.
  • Rekomendowane wymagania dotyczące próbek:
    • Typ próbki: genomowe DNA
    • Ilość: > 100ng
    • Koncentracja (NanoDrop): >2 ng/μL
    • Objętość: >20 μL
    • Brak degradacji i kontaminacji
  • Możliwa jest również izolacja DNA z dostarczonych próbek. Szczegóły tutaj.

Analiza bioinformatyczna WGBS

Analiza bioinformatyczna danych WGBS obejmuje wieloetapowe przetwarzanie i interpretację wyników sekwencjonowania, prowadzące do kompleksowej charakterystyki metylomu badanego organizmu.

  1. Kontrola jakości danych (Data Quality Control):Pierwszym etapem jest ocena jakości surowych danych sekwencyjnych. Analizowane są parametry takie jak jakość odczytów, zawartość adapterów, poziom duplikacji oraz skuteczność konwersji bisulfidowej. Na tej podstawie wykonywane jest filtrowanie i oczyszczanie danych przed dalszą analizą.
  2. Mapowanie do genomu referencyjnego.Przefiltrowane odczyty są mapowane do odpowiedniego genomu referencyjnego przy użyciu algorytmów dedykowanych dla danych po konwersji bisulfidowej. Raport obejmuje:
    • statystyki mapowania odczytów,
    • efektywność wyrównania do genomu,
    • głębokość sekwencjonowania,
    • pokrycie analizowanych pozycji cytozynowych,
    • ocenę kompletności danych dla poszczególnych regionów genomu.
  3. Identyfikacja metylacji DNA.Na podstawie zmapowanych odczytów identyfikowane są miejsca metylacji DNA z rozdzielczością pojedynczego nukleotydu. Analiza obejmuje:
    • identyfikację metylowanych cytozyn (mC),
    • określenie poziomu metylacji dla każdego miejsca,
    • charakterystykę kontekstów metylacji:
      • mCG (CpG),
      • mCHG,
      • mCHH (gdzie H = A, T lub C),
    • analizę rozmieszczenia metylowanych miejsc w genomie,
    • identyfikację motywów sekwencyjnych związanych z metylacją.
  4. Profilowanie metylacji w skali całego genomuKolejny etap obejmuje kompleksową charakterystykę krajobrazu epigenetycznego badanego genomu. W ramach analizy generowane są:
    • profile gęstości i rozmieszczenia metylacji w całym genomie,
    • poziomy metylacji w regionach funkcjonalnych (promotory, eksony, introny, regiony międzygenowe),
    • profile metylacji w regionach upstream i downstream genów,
    • analiza metylacji wysp CpG, brzegów wysp (CpG shores) oraz regionów sąsiadujących,
    • adnotacja genów związanych z obserwowanymi wzorami metylacji.
  5. Analiza różnic pomiędzy grupami.W projektach porównawczych wykonywana jest analiza różnicowej metylacji pomiędzy badanymi grupami lub warunkami eksperymentalnymi. Obejmuje ona:
    • identyfikację różnicowo metylowanych regionów (DMR - Differentially Methylated Regions),
    • adnotację DMR względem genów i elementów regulatorowych,
    • identyfikację genów związanych z różnicową metylacją,
    • analizę wzbogacenia funkcjonalnego GO (Gene Ontology),
    • analizę szlaków biologicznych KEGG (Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes),
    • interpretację biologiczną zmian epigenetycznych w kontekście badanego procesu lub fenotypu.

Efektem końcowym jest szczegółowy raport zawierający profile metylacji, wyniki analiz statystycznych, identyfikację regionów różnicowej metylacji oraz interpretację funkcjonalną uzyskanych wyników.

Wybrane realizacje i publikacje naszych klientów

Sprawdź, dla jakich instytucji wykonujemy sekwencjonowanie NGS i w jakich publikacjach wykorzystano dostarczone przez nas dane.

Wybrane realizacje (3 zlecenia)

W trosce o poufność współpracy z naszymi klientami prezentujemy jedynie wybrane realizacje dla sektora publicznego, nieobjęte umowami o zachowaniu poufności (NDA).
Ostatnia aktualizacja: 05.11.2026
Zobacz więcej realizacji weSEQ.IT (151)
SŁOWA KLUCZOWE
WGBSmetylacja DNAmetylombisulfite sequencingsekwencjonowanie bisulfitoweepigenetyka5mCWhole-Genome Bisulfite Sequencing - WGBS
Czy ten artykuł był pomocny?
Twoja odpowiedź pomaga nam poprawiać bazę wiedzy.

Szukasz innego artykułu?

Wróć do wszystkich tematów →

Porozmawiajmy o Twoim projekcie.

Ofertę przygotowujemy w ciągu 48 godzin od zapytania.